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So wie das Leben in großen Städten pulsiert, gedeiht es auch in den überfüllten Umgebungen innerhalb von Zellen. Das Zellinnere ist dabei dicht gepackt mit Biomolekülen wie Proteinen und Nukleinsäuren. Wie verteilt sich all dieses Material innerhalb einer Zelle? Und was reguliert ihre Verteilung? In einer kürzlich in ›Nature Communications‹ veröffentlichten Studie messen Forscher*innen die subzellulären Dichten einer Vielzahl von Organismen. Ihr Ziel ist es, biomolekulare Prozesse von Hefezellen bis zu menschlichen Zellen besser zu verstehen.
Anders als die meisten Wissenschaftler*innen meinen würden
Herkömmliche wissenschaftliche Lehrbücher beschreiben den Zellkern als einen Raum, der mit einer beeindruckenden Menge an DNA gewickelt um Histonproteine gefüllt ist. Nun hat ein internationales Forscherteam unter Beteiligung des Max-Planck-Zentrums für Physik und Medizin, Erlangen (MPZPM), des Max-Planck-Instituts für Infektionsbiologie, Berlin (MPIIB)
und des Max-Planck-Instituts für die Physik des Lichts, Erlangen (MPL) entdeckt, dass der Zellkern entgegen den Erwartungen weniger dicht ist als das umgebende Zytoplasma. Trotz ihrer reichhaltigen biomolekularen Zusammensetzung enthalten Zellkerne im Vergleich zum gleichen Volumen des umgebenden Zytoplasmas weniger Trockenmasse.
Prof. Simone Reber, MPIIB und Hochschule für Technik und Wirtschaft Berlin, erklärt, warum es wichtig ist, zu verstehen, wie dicht zelluläre Umgebungen sind: „Es ist unerlässlich, die ‚reale‘ Umgebung innerhalb von Zellen zu verstehen, da sie die biomolekulare Struktur, Dynamik und Funktion beeinflusst. Die wichtigste Erkenntnis unserer Studie ist, dass verschiedene Spezies zwar in ihrer absoluten intrazellulären Dichte stark variieren. Das Verhältnis zwischen Kern- und Zytoplasmadichte (NC) bleibt jedoch gleich.“
„Obwohl jeder Organismus in seiner biomolekularen Zusammensetzung einzigartig ist, ist es wahrscheinlich, dass die grundlegenden physikalischen Prinzipien des Druckgleichgewichts die Dichte und das Volumen des Zellkerns bestimmen“, erklärt Prof. Vasily Zaburdaev, MPZPM und Friedrich-Alexander-Universität Erlangen-Nürnberg.
Mit Licht die Dichte im Mikromaßstab untersuchen
Wie lässt sich die Dichte in mikroskopisch kleinen Objekten wie einzelnen Zellkompartimenten messen? Wissenschaftler*innen nutzen dafür Licht. Es ermöglicht nicht nur die Untersuchung von Zellen, sondern auch deren Manipulation. Licht kann Kräfte ausüben, sodass Laserstrahlen an Zellen „ziehen“ und mit einem ›optischen Stretcher‹ deren mechanische Eigenschaften messen können. „Wir hatten zuvor versucht, unseren optischen Stretcher auf Zellkerne anzuwenden, waren jedoch nicht erfolgreich. Die physikalisch plausible, damals aber biologisch nicht nachvollziehbare Erklärung war, dass der Zellkern eine geringere Dichte als das ihn umgebende Material hatte“, merkt Prof. Jochen Guck, MPZPM und Direktor am MPL, Erlangen an. Daher entwickelten die Forscher*innen ein optisches Setup, das optische Beugungstomographie (Optical Diffraction Tomography, ODT) und konfokale Fluoreszenzmikroskopie miteinander kombiniert. So erhalten die Wissenschaftler*innen eine dreidimensionale Dichteverteilung innerhalb von Zellen mit hoher Auflösung.
Dichte als grundlegende Eigenschaft und diagnostischer Indikator
„Während die NC-Dichteverhältnisse von Hefe- bis zu menschlichen Zellen gleichbleiben, sehen wir bei Krankheiten Abweichungen. In Stresssituationen wie dem Altern, also der Seneszenz, werden die Zellkerne dichter als das Zytoplasma. Die Studie weist somit auf die grundlegende Bedeutung der Dichte als Variable hin, die gesunde Zellprozesse bestimmt“, sagt Reber. Die Wissenschaftler*innen wollen nun verstehen, wie Zellen eine bestimmte intrazelluläre Dichteverteilung aufbauen und aufrechterhalten, um weitere biophysikalische Mechanismen zu entschlüsseln, die im gesunden und im pathologischen Zustand Zellfunktionen regulieren.
Eine internationale und interdisziplinäre Zusammenarbeit
„Abgesehen davon, dass es eine spannende Frage war, die es zu klären galt, war für mich besonders beeindruckend, wie wir das Fachwissen von Forschenden an verschiedenen Standorten bündeln konnten, um ein gemeinsames Ziel zu erreichen“, sagt Abin Biswas, Postdoktorand am MPZPM und MPIIB und Erstautor. Tatsächlich war diese Arbeit das Ergebnis einer engen Zusammenarbeit mit internationalen Kollegen vom MPI für Molekulargenetik, MPI für Zellbiologie und dem Albert Einstein College of Medicine in New York.
Prof. Jochen Guck
Max-Planck-Zentrum für Physik und Medizin /
Max-Planck-Institut für die Physik des Lichts
›Physik der Zelle‹
https://mpzpm.mpg.de | jochen.guck@mpzpm.mpg.de
Prof. Simone Reber
Max-Planck-Institut für Infektionsbiologie
›Quantitative Biologie‹
Hochschule für Technik und Wirtschaft Berlin
https://www.mpiib-berlin.mpg.de | reber@mpiib-berlin.mpg.de
Prof. Vasily Zaburdaev
Max-Planck-Zentrum für Physik und Medizin
›Immunophysik‹
FAU Erlangen-Nürnberg
https://mpzpm.mpg.de | vasily.zaburdaev@mpzpm.mpg.de
Biswas, A., Muñoz, O., Kim, K. et al. Conserved nucleocytoplasmic density homeostasis drives cellular organization across eukaryotes. Nat Commun 16, 7597 (2025).
DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-025-62605-0
Ein Zellkern (Nukleus), der in vitro in Xenopus laevis-Eiextrakt (afrikanischer Krallenfrosch) rekon ...
Copyright: Abin Biswas
Oben: Illustration des komplexen Innenraums innerhalb des Kerns und des Zytoplasmas. Repräsentative ...
Copyright: Abin Biswas, Illustration by David S. Goodsell
Criteria of this press release:
Journalists
Biology, Medicine, Physics / astronomy
transregional, national
Scientific Publications
German
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